虎耳兰的生物特性
6一和组合如下：'一1：6一0.5/(单位下同)+0.2；一2：6一0.5+1.0；一3：6一0.5+2.0；一4：6一1.0+1.0；一5：6一2.0+1.0；一6：6一3.0+1.0；一7；6一2.0+0.1；1—8:6一3.0+0.1.1.3壮苗增殖将带有不定芽的外植体块切割成小块，接种到+0.65%琼脂+3%蔗糖+不同6一和浓度配比+不同浓度的培养基上，每种培养基接种20块，重复3次。6一和比例及浓度组合女Ⅱ下：一1：6一2.0+0.；一2：6一2.0+0.1+0.2%；一3：6一0.5+2.0。
统计不定芽的增殖倍数(增殖倍数=总芽数/接种芽数)，观察不定芽生长情况。1.4生根在无菌条件下，取以一2培养基获得的长势基本一致的2.5以上的无根试管苗，接种在1/2+0.65%琼脂+1.5%蔗糖+不同浓度的或+不同浓度的培养基中，每种培养基接种66株，重复3次。培养20后统计各培养基中试管苗的生根率，40后测定根的生长指标(根数，根长，根冠比).或浓度及浓度组合如下:一1：0.2；一2：0.2+0.2%；一3：0.2；一4：0.2+0.2%.1.5移栽苗长出旺盛的根后，在室温下开瓶炼苗21，直接移栽入1/3泥炭+2/3沙壤土的花盆中；或在室温下炼苗2后，先移入(泥炭):(珍珠岩):(蛭石)=4：2：1的基质中，浇施0.1%溶液(加几滴)，一周后再移入1/3泥炭+2/3沙壤土的花盆中。
以上培养基值调至5.8左右；培养温度25±2，光照强度1500～2000，每日光照1211.2结果与分析2.1不定芽的诱导将外植体块分别接种到一1，一2，一3，一4，一5，一6，一7，一8培养基上，约15后外植体均有明显增厚膨大。继续培养7后，外植体切口处出现少量愈伤组织，再继续培养7，在一7，一8培养基上的外植体上形成了不定芽。
在一1，一2，一3，一4，一5，一6培养基上出现的少量愈伤组织继续长大，在外植体四周形成明显增大的愈伤组织块，再继续培养30，一1，一2，一3培养基上的愈伤组织块分化出少量的不定芽，而一4，一5，一6培养基上的愈伤组织块继续长大，若再继续培养多逐渐褐化，极少能分化出不定芽，有些还出现了不定根的分化.统计以上培养基外植体的不定芽诱导率[不定芽诱导率=出芽的外植体数/(接种的外植体数一污染的外植体数)，并观察不定芽的诱导情况。
虎耳兰的组织培养229注：一出芽极少，长势差；+出芽较少，长势一般;++出芽稍多，长势稍好;+++出芽多，长势较好，但有白化苗；++++出芽多生长旺盛，无白化苗(下表均同)：一.+.++，+十+，++++()?由表1可知，不同6一和组合对不定芽诱导率差异显着培养基一8和一7显着增加了不定芽的诱导率，不定芽诱导率达到100%和95%，但前者不定芽的生长势比后者差。
分析结果认为，培养基1—7即6一和浓度分别为2.0和0.1时最有利于虎耳兰不定芽的诱导.2.2不定芽增殖培养基的筛选由表2可知，一1和一2培养基显着增加了不定芽增殖倍数，其中一2培养基中不定芽发育良好。呈深绿色，生长健壮，旺盛，经几次继代后，可形成大量不定芽；一1培养基中的不定芽长势较一2为差，黄绿色，生长较慢；一3培养基显着降低了不定芽增殖倍数，同时愈伤组织易分化根再继续培养一段时间。
